• Тел./Факс: +7 (495) 789-48-11
  • E-mail: info@vetfaktor.ru vet@faktor.ru
  • Россия, 108840, г. Троицк, ул. Квантовая, д. 3
  • Режим работы: 8:00 - 16:30
  • ООО «ВЕТ ФАКТОР»
Личный кабинет

Методы лабораторной диагностики болезней животных: ПЦР, ИФА, РИД и экспресс-тесты

08.10.2026 10:00:00

Методы лабораторной диагностики болезней животных: ПЦР, ИФА, РИД и экспресс-тесты

ПЦР ищет ДНК или РНК возбудителя, ИФА и РИД – антитела, экспресс-тест даёт ответ рядом с животным, посев выделяет живую культуру. Метод выбирают под цель: подтвердить диагноз, проверить стадо, оценить иммунитет после вакцинации. Разбираем, что выявляет каждый метод, какие пробы ему нужны, где чаще всего ошибаются при трактовке и какой метод прямо назван в ветеринарных правилах.

Цель исследования определяет метод

От задачи исследования к методу: чек-лист, планшет ИФА и пробирки для ПЦР

Руководство ВОЗЖ по диагностическим тестам (Terrestrial Manual, гл. 1.1.6) называет шесть самых частых назначений лабораторного теста:

  • доказать отсутствие инфекции в стране, зоне, компартменте или стаде;
  • подтвердить статус отдельного животного или партии продукции при перемещении и торговле;
  • поддержать программу оздоровления;
  • подтвердить диагноз у подозрительного или клинически больного животного, в том числе после положительного скрининга;
  • оценить распространённость инфекции для анализа риска;
  • определить иммунный статус животного или группы после вакцинации.

Набор валидируют под назначение, вид животных и тип пробы. Это относится и к лабораторным методам, и к экспресс-тестам у животного.

Разные цели требуют разных свойств теста. Скрининг применяют к здоровому поголовью, поэтому от него ждут высокой диагностической чувствительности: пропустить заражённое животное дороже. Подтверждающий тест решает обратную задачу – снизить долю ложноположительных результатов. Отсюда частая схема: чувствительный скрининг, затем специфичное подтверждение. При оценке поствакцинального иммунитета ложноположительный результат особенно опасен: животное сочтут защищённым, хотя иммунитета у него нет.

ПЦР: ДНК и РНК возбудителя

ПЦР выявляет участок генома возбудителя: кривая накопления сигнала, пробирки и двойная спираль ДНК

ПЦР выявляет участок генома возбудителя. Это прямой метод: он отвечает на вопрос, есть ли в пробе генетический материал. Отсюда важное следствие. ПЦР находит последовательности и живых, и погибших микроорганизмов, пока нуклеиновая кислота сохраняется в пробе. Посеву для роста нужен живой возбудитель.

Перед реакцией нуклеиновую кислоту выделяют из клинического материала отдельным набором. ВОЗЖ советует выбирать метод экстракции заранее: при больших потоках проб автоматическая экстракция может оказаться необходимой.

Высокая аналитическая чувствительность амплификации создаёт и риск. Перенос ампликонов от пробы к пробе даёт ложноположительные результаты. ВОЗЖ рекомендует разделять этапы по помещениям или боксам, менять халаты и перчатки, вести программы уборки.

Результат читают вместе с контролями:

  1. Контроль без матрицы показывает, произошла ли контаминация пробы: сигнал появляется там, где его быть не должно.
  2. Контроль ингибирования показывает, подавлена ли реакция веществами пробы. Если он не сработал, проба содержит ингибирующие вещества. Её отрицательный результат отрицательным не считают: тест отработал некорректно.

Ингибиторы чаще встречаются в фекалиях и сперме, в крови – реже. Клоакальные пробы содержат их чаще, чем пробы из ротовой полости.

ИФА: антитела и антиген

Планшет ИФА и дозатор: пробу вносят в лунку планшета

ИФА выявляет антитела или антигены в сыворотке, плазме крови и других пробах. Метод применяют для серологического мониторинга поголовья, скрининга и оценки иммунитета после вакцинации.

Форматы различаются тем, что сорбировано на планшете и чем ловят искомое:

ФорматКак устроенГде удобен
Непрямойсвязанные антитела пробы выявляют антивидовым конъюгатомскрининг больших количеств проб; один набор рассчитан на один или несколько видов животных
Конкурентный (блокирующий)антитела пробы конкурируют с меченым антителом за антиген на планшетевиды, для которых нет антивидовых конъюгатов; сыворотку берут в низких разведениях, меньше помех от неспецифического связывания
Сэндвичантиген удерживает сорбированное антитело-ловушкакрупные антигены и сложные белки; ограничение формата – у антигена должно быть не меньше двух антигенных участков

ИФА на антиген и ПЦР решают общую задачу – найти самого возбудителя. У тестов на антиген и возбудителя диагностическое окно обычно заметно уже, чем у тестов на антитела: иммунный ответ держится дольше, чем сам возбудитель в пробе.

РИД: антитела в агаровом геле

Чашка с агаровым гелем: лунки с сывороткой и антигеном, линия преципитации

РИД – реакция иммунодиффузии в агаровом геле (AGID). Сыворотку и антиген вносят в соседние лунки геля. При встрече образуется линия преципитации, её читают глазом. Оборудование простое, расходов мало.

ВОЗЖ относит РИД к менее распространённым методам выявления антител. Для лейкоза КРС руководство описывает РИД как специфичный, но не очень чувствительный тест для сыворотки отдельных животных. Для молока он непригоден, кроме первого молозива.

Практический вывод: РИД хорошо подтверждает и слабее находит. Когда от серологии по стаду нужна чувствительность, к ней добавляют ИФА или ПЦР.

Экспресс-тесты ИХА: ответ рядом с животным

Тест-полоска ИХА с контрольной и тестовой линиями

Иммунохроматографический анализ (ИХА) ставят на тест-полоске или в кассете. ВОЗЖ называет такие устройства point of care, или pen-side tests, и относит их к новым методам выявления антител.

Условия работы ВОЗЖ описывает прямо. Экспресс-тесты применяют в поле при разных условиях среды, на разных типах проб, собранных в нестерильных условиях, операторами с разной подготовкой. Поэтому от теста требуют устойчивости к колебаниям температуры, влажности и освещённости и к квалификации оператора. ВОЗЖ указывает: необходимость подтверждающего исследования и отчётности аккредитованной лаборатории по положительному результату – особенно при исследовании на экзотические болезни – должна быть закреплена в действующих правилах и руководствах по тестированию.

Отсюда и роль ИХА: быстро отобрать животных для дальнейшего исследования, получить предварительную оценку там, где лаборатория далеко. Диагноз устанавливают по результатам лабораторных исследований в порядке, который задают ветеринарные правила.

Посев, микроскопия и аллергическая проба

Чашка Петри с колониями, микроскоп и шприц для аллергической пробы

Классические методы остаются в правилах там, где нужен живой возбудитель или реакция клеточного иммунитета.

Бактериологическое исследование по российским ветправилам включает бактериоскопию, культуральный метод с выделением чистой культуры возбудителя и биологическую пробу. Посеву нужен живой возбудитель – этим он отличается от ПЦР. По Правилам № 534 ПЦР при туберкулёзе применяют как экспресс-тест, но результат обязательно подтверждают бактериологическим исследованием (п. 25).

Аллергическая проба устроена иначе: препарат для диагностики туберкулёза вводят животному и учитывают реакцию. Плановые аллергические исследования проводят, чтобы доказать отсутствие циркуляции возбудителя туберкулёза в хозяйстве (п. 8 Правил № 534).

Гистологическое исследование ищет характерные изменения в тканях. По Правилам № 156 диагноз на лейкоз считается установленным и в том случае, когда такие изменения обнаружены при гистологическом исследовании (п. 21).

Проба и доставка: где теряется результат

Пробирка крови с ЭДТА, пробирка без антикоагулянта и термос для перевозки проб

Глава 1.1.2 руководства ВОЗЖ начинается с простого тезиса: исследование зависит от качества и пригодности проб. Четыре частые потери:

  1. Несовместимый антикоагулянт или консервант. Часть тестов не работает с гепарином, формалином, сухим льдом, а иногда и с замораживанием. Пробирку подбирают под метод: для серологии кровь берут без антикоагулянта, для ПЦР на провирус лейкоза – с антикоагулянтом.
  2. Гемолиз. Он ухудшает серологические исследования. Причины: перегрев пробы, задержка с отделением сыворотки от эритроцитов, слишком тонкая игла, перенос крови из шприца через иглу.
  3. Бактериальное загрязнение. Вместе с остатками эритроцитов оно даёт ложноположительные реакции в тестах агглютинационного типа.
  4. Задержка доставки. Предельный срок задают ветеринарные правила по конкретной болезни.

Сыворотку получают из крови без антикоагулянта: сгустку дают сократиться при комнатной температуре, защищая пробу от жары и холода. Пробы фекалий держат охлаждёнными – в холодильнике при 4 °C или на льду – и исследуют как можно быстрее.

Три ошибки трактовки серологии

Три ловушки серологии: колостральные антитела, окно до сероконверсии, вакцинные антитела

Колостральные антитела у молодняка. Телёнок получает антитела с молозивом. Для лейкоза КРС руководство ВОЗЖ указывает: материнские антитела могут исчезать до 6–7 месяцев, и отличить их от антител активной инфекции серология не позволяет. Активное заражение подтверждает ПЦР на провирус. Телята с колостральными антителами названы в руководстве среди случаев, когда полезна ПЦР по отдельному животному. Правила № 156 сделали это нормой: животных от 15 календарных дней до 6 месяцев включительно исследуют молекулярно-биологическим методом.

Окно до сероконверсии. Диагностическое окно – промежуток между контактом с возбудителем и моментом, когда антитела впервые выявляются. Для вируса лейкоза КРС руководство ВОЗЖ приводит 3–16 недель. Отрицательная серология у недавно заражённого животного ожидаема и болезнь не исключает. У лейкоза вклад вносит и длинный инкубационный период: правила называют срок от 2 месяцев до 6 лет.

Отдельный случай – околородовый период. Антитела уходят из крови коровы в молозиво, и РИД может их не увидеть. Руководство ВОЗЖ не считает окончательным отрицательный результат РИД за 2–6 недель до отёла и 1–2 недели после; исследование повторяют. Правила № 156 решают это сроком отбора: кровь на серологию берут не раньше чем через 14 календарных дней после отёла и не позднее чем за 14 дней до него.

Вакцинные антитела. Серология показывает контакт с антигеном, а его источником бывает вакцина. Правила № 703 требуют указывать в сопроводительном письме дату последней вакцинации, номер серии, наименование и производителя вакцины (п. 23). Эти данные вносят, если их представили владелец животных или ветеринарный специалист. Когда прививок не было, в письме делают отметку об этом. Правила № 156 не разрешают брать кровь на серологию раньше чем через 14 календарных дней после введения живых вакцин или аллергенов (п. 18). Если данные о вакцинации не дошли до лаборатории, результат прочитают неверно.

Метод под задачу: сводная таблица

МетодЧто выявляетПробаКогда применяют
ПЦР в реальном времениДНК или РНК возбудителя, в том числе погибшегопо инструкции к набору; для набора на провирус лейкоза КРС – цельная кровь и продукты питанияподтверждение случая; молодняк с колостральными антителами; период до сероконверсии
ИФА на антителаантитела к возбудителюсыворотка или плазма, в части наборов – объединённые пробымониторинг поголовья, скрининг, оценка иммунитета после вакцинации
ИФА на антигенантиген возбудителяпо инструкции к наборупериод выделения возбудителя; окно уже, чем у серологии
РИДпреципитирующие антителасыворотка или плазмасерология там, где метод закреплён правилами; подтверждение
ИХА (экспресс-тест)антитела или антигенпо инструкции к теступредварительная оценка в поле; положительный результат подтверждают в лаборатории
Бактериологическое исследованиеживого возбудителяпатматериал, молоко, секреты по правиламдиагноз на туберкулёз и бруцеллёз
Аллергическая пробареакцию животного на введённый препаратпрепарат вводят животномуплановые исследования на туберкулёз (п. 8 Правил № 534)
Гематологическое исследованиеизменения картины кровикровь с 10-процентным раствором ЭДТАлейкоз КРС: у животных старше 6 месяцев после положительной серологии (п. 18 Правил № 156)

Что требуют ветеринарные правила

Три действующих приказа Минсельхоза России: № 156, № 703 и № 534

Российские ветеринарные правила часто называют метод прямо. Три примера.

Лейкоз КРС. Правила, утверждённые приказом Минсельхоза России от 24.03.2021 № 156, действуют с 1 сентября 2021 года до 1 сентября 2027 года. Серологические исследования проводят методами ИФА и (или) РИД, молекулярно-биологические – методом ПЦР (п. 20). Метод привязан к возрасту (п. 18). От животных старше 6 месяцев берут 5–7 мл крови без антикоагулянта или с фактором свёртывания – на серологию. От животных от 15 календарных дней до 6 месяцев включительно берут 5–7 мл крови с антикоагулянтом – на молекулярно-биологическое исследование.

Плановую серологию у животных старше 6 месяцев проводят раз в год. На быков-производителей (доноров), коров-доноров эмбрионов и животных-продуцентов это правило не распространяется: животных-продуцентов проверяют 2 раза в год, быков-производителей, используемых в случке, – 3 раза в год (п. 9). Подпункт «а» пункта 9, пункты 18, 19 и 21 действуют в редакции приказа Минсельхоза России от 08.04.2025 № 229 – с 1 сентября 2025 года. Разбор по группам животных – в статье «Лейкоз КРС: РИД, ИФА или ПЦР».

Бруцеллёз. Правила, утверждённые приказом Минсельхоза России от 22.11.2024 № 703, действуют с 1 марта 2025 года до 1 марта 2031 года. Исследования проводят бактериологическим методом, ПЦР и серологическими методами из таблицы № 2 пункта 13 Правил (п. 24). При сомнительном результате серологии кровь берут повторно через 25–45 календарных дней со дня первичного отбора (п. 22). Пробы доставляют в лабораторию в течение 48 часов с момента отбора (п. 23).

Туберкулёз. Правила, утверждённые приказом Минсельхоза России от 08.09.2020 № 534, действуют с 1 марта 2021 года до 1 марта 2027 года. Для доказательства отсутствия циркуляции возбудителя проводят плановые аллергические исследования (п. 8 в редакции приказа Минсельхоза России от 02.11.2022 № 777, действует с 1 марта 2023 года). Методы лабораторного исследования – бактериологические, включая бактериоскопический, культуральный и биологическую пробу, а также ПЦР (п. 25). ПЦР применяют для идентификации возбудителя при бактериологическом исследовании и как экспресс-тест с обязательным подтверждением бактериологическими исследованиями. Отрицательный результат ПЦР окончательным не считают. Пробы доставляют в лабораторию в течение 72 часов с момента отбора (п. 24).

Наборы ВЕТ ФАКТОР для лабораторной диагностики

Разницу между методами удобно увидеть на одной болезни. Для лейкоза КРС в каталоге есть наборы под все три метода, которые называют Правила № 156:

  • ПЦР-ЛЕЙКОЗ-КРС-ФАКТОР (кат. № D11816-VET): выявление ДНК провируса лейкоза КРС (BLV) в цельной крови и продуктах питания методом ПЦР с флуоресцентной детекцией в реальном времени. Для работы нужен набор для экстракции нуклеиновых кислот.
  • ID Screen® BLV Competition (ID.vet, кат. № BLVC): конкурентный ИФА для обнаружения антител к gp51 – белку оболочки вируса энзоотического лейкоза КРС. Материал – сыворотка или плазма, индивидуальные или объединённые пробы до 10 образцов.
  • IDvet BLV AGID (ID.vet, кат. № BLV-AGID): иммунодиффузионный тест на агаровом геле для обнаружения антител к gp51 BLV в сыворотке или плазме крупного рогатого скота.
  • ИХА-БРУЦЕЛЛЁЗ-КРС (кат. № E2507-VET): экспресс-тест на антитела к бруцеллёзу крупного рогатого скота.
  • ДНК/РНК-С-ФАКТОР (кат. № EDR001-VET): экстракция ДНК и РНК из клинического материала для последующих обратной транскрипции и ПЦР.

Разделы каталога устроены по методу. В разделе ПЦР – более 130 наборов собственного производства, более 100 из них для выявления возбудителей болезней животных, птицы, рыб и пчёл. Фасовка у большинства – 55 и 110 реакций. В разделе ИФА – свыше 110 наборов ID.vet для серологической диагностики и контрольные сыворотки ID.vet. Отдельно собраны тест-полоски ИХА и весь каталог.

Подобрать наборы под задачи и оборудование лаборатории помогут специалисты ВЕТ ФАКТОР: +7 (495) 789-48-11, vet@faktor.ru.

Частые вопросы

Чем ПЦР отличается от ИФА?

ПЦР ищет генетический материал возбудителя, ИФА – антитела к нему или его антиген. ПЦР отвечает на вопрос «возбудитель здесь», серология – «организм с ним встречался». Серология не отличает перенесённую инфекцию от вакцинации, а ПЦР выявляет нуклеиновую кислоту и погибших микроорганизмов.

Почему у телёнка положительная серология при отрицательной ПЦР?

Частая причина – колостральные антитела. По данным ВОЗЖ, материнские антитела к вирусу лейкоза КРС могут сохраняться до 6–7 месяцев, а заражения при этом нет. Поэтому Правила № 156 для животных от 15 календарных дней до 6 месяцев включительно предписывают молекулярно-биологическое исследование.

Можно ли поставить диагноз по экспресс-тесту?

Нет. ВОЗЖ указывает: необходимость подтверждающего исследования и отчётности аккредитованной лаборатории по положительному результату – особенно при исследовании на экзотические болезни – должна быть закреплена в правилах тестирования. Диагноз устанавливают по результатам лабораторных исследований в порядке, установленном ветеринарными правилами по конкретной болезни.

Что делать при сомнительном результате серологии на бруцеллёз?

Правила № 703 предусматривают повторный отбор проб крови через 25–45 календарных дней со дня первичного отбора (п. 22). Решение о дальнейших действиях принимает госветслужба.

Зачем лаборатории дата вакцинации в сопроводительном письме?

Чтобы по срокам отличить поствакцинальные антитела от антител после заражения. Правила № 703 требуют указать в сопроводительном письме дату последней вакцинации, номер серии, наименование и производителя вакцины (п. 23). Эти сведения вносят, если их представил владелец животных или ветеринарный специалист. Отсутствие прививок тоже отмечают. Правила № 156 задают и срок отбора: не раньше чем через 14 календарных дней после введения живых вакцин или аллергенов (п. 18).

Источники

Материал носит справочный характер и не заменяет ветеринарные правила и заключение ветеринарного специалиста. Диагноз устанавливают по результатам лабораторных исследований в порядке, установленном законодательством.


Запросить инструкцию

Пришлём инструкцию на указанную электронную почту.

Артикул:

Контактные данные

Об обработке данных читайте в политике конфиденциальности.